Actividad antiviral del alga "Sargassum fluitans" (Børgesen) Børgesen 1914, frente al echovirus 9, el coxsackievirus A16 y el coxsackievirus A24
Palabras clave:
Sargassum fluitans, antiviral, enterovirus, echovirus, coxsackievirusResumen
Los enterovirus causan enfermedades humanas tales como el Síndrome de Mano, Pie y Boca, la conjuntivitis hemorrágica y la meningoencefalitis viral. Hasta el momento no existe una terapia específica para la mayoría de las infecciones por enterovirus. Las algas pardas del género Sargassum sintetizan una gran variedad de metabolitos, los cuales les convierten en fuentes potenciales de compuestos con actividad antiviral. Este estudio tuvo como objetivo evaluar la actividad antiviral in vitro de un extracto hidroalcohólico de Sargassum fluitans contra tres enterovirus humanos: coxsackievirus A16, echovirus 9 and coxsackievirus A24.
La citotoxicidad del extracto se evaluó en las células Vero, RD y Hep-2 mediante el método del MTT. La actividad antiviral (CE50) se evaluó mediante la inhibición del efecto citopático en las células. La actividad virucida extracelular y la reducción del número de viriones se determinaron mediante ensayo de titulación viral de punto final. La actividad antiviral se caracterizó mediante un ensayo de tiempo de adición. El extracto mostró actividad antiviral inhibitoria contra todos los virus probados. El extracto también exhibió efecto virucida contra el echovirus 9 y el coxsackievirus A16 y redujo la formación de partículas virales infectivas en las células en más de tres logaritmos. El extracto fue capaz de inhibir las etapas tempranas y tardías del ciclo replicativo. Se concluye que el presente estudio demostró la efectiva actividad antiviral in vitro del alga parda Sargassum fluitans contra enterovirus clínicamente relevantes, apoyando su uso como fuente potencial de compuestos antivirales.
Recibido: 7.10.2020 Aceptado: 10.3.2021
Editor: Aymee Robainas Barcia
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Adams, M.J., Lefkowitz, E.J., King, A.M., Harrach, B., Harrison, R.L., Knowles, N.J. (2017). Changes to taxonomy and the International Code of Virus Classification and Nomenclature ratified by the International Committee on Taxonomy of Viruses. Arch. Virol., 162(8), 2505-38.
Adekunle, J. y Cephas, T.O. (2014). Impact of cell lines included in enterovirus isolation protocol on perception of nonpolioenterovirus species C diversity. J. Virol. Methods, 207, 238-47.
Adeniji, J.A., Adewumi, M.O., Oragwa, A.O., George, U.E., Faleye, T.O. e Ibok, U.I. (2017). Preponderance of enterovirus C in RD-L20B-cell-culture-negative stool samples from children diagnosed with acute flaccid paralysis in Nigeria. Arch. Virol., 162, 3089-101.
Ahmadi, A., Zorofchian, S., Abubakar, S. y Zandi, K. (2015). Antiviral potential of algae polysaccharides isolated from marine sources: a review. BioMed Res. Int., pp.10.
Álvarez, A.L, del Barrio, G., Kourí, V., Martínez, P. A, Suárez, B. y Parra, F. (2009).In vitro anti-herpetic activity of an aqueous extract from the plant Phyllanthus orbicularis. Phytomedicine, 16, 960-6.
Baggen, J., Jan, H.T., Strating, J.R.P.M. y van Kuppeveld, F.J.M. (2018). The life cycle of non-polio enteroviruses and how to target it. Nat. Rev. Microbiol., (6), 368-381.
Banerjee, I., Ramani, S., Primrose, B., Moses, P., IturrizaGomara, M. y Gray, J.J. (2006). Comparative study of the epidemiology of rotavirus in children from a community-based birth cohort and a hospital in south India. J. Clin. Microbiol., 44(7), 2468-74.
Behbahani, M., Shanehsazzadeh, M., Shokoohinia, Y. y Soltani, M. (2013). Evaluation of anti herpetic activity of methanol seed extract and fractions of Securigera securidaca in vitro. J AntivirAntiretrovir., 5(4), 72-76.
Bostina, M., Levy, H., Filman, D.J. y Hogle, J.M. (2011). Poliovirus RNA is released from the capsid near a twofold symmetry axis. J. Virology, 85(2), 776-83.
Casas, C.P., Borja, G.P., Santos, F.N., Nico, D., Souza, L.O.P., Tinoco, L.W., Palatnik-de-Sousa, C.B. (2006). Acylated and deacylatedsaponins of Quillajasaponaria mixture as adjuvants for the FML-vaccine against visceral leishmaniasis. Vaccine, 24(18), 3909-20.
Chiang, L.C., Chiang, W., Chang, M.Y., Ng, L.T. y Lin, C.C. (2002). Antiviral activity of Plant ago major extracts and related compounds in vitro. Antiviral Res., 55, 53-62.
Cos, P., Vlietinck, A. J., Vanden Berghe, D. y Maes, L. (2006). Anti-infective potential of natural products: How to develop a stronger in vitro ‘proof-of-concept. J. Ethnopharmacol., 106(3), 290-302.
del Barrio, G. y Parra, F. (2000). Evaluation of the antiviral activity of an aqueous extract from Phyllanthus orbicularis. J. Ethnopharmacol., 72(1-2), 317-22.
Dittmann, J., Stertz, S., Grimm, D., Steel, J., García-Sastre A., Haller, O. y Kochs, G. (2008) Influenza A Virus Strains Differ in Sensitivity to the Antiviral Action of Mx-GTPase. American Society for Microbiology., 82(7). doi:10.1128/JVI.01753-07.
Fortin, H., Vigor, C., Lohezic-Le, F., Robin, V., Le Bosse, B., Boustie, J. y Amoros, M. (2002). In vitro antiviral activity of thirty-six plants from Reunion Island. Fitoterapia, 73, 346-50.
García, A., Rodríguez, J. E., Rodríguez, G., Julian, J. y Fernández, J. (2015). Extraction of phenolic compounds from virgin olive oil by deep eutectic solvents. Food Chem., 197, 554-61.
Ghada, S.E., Khaled, A.S. y Mohamed, E.E. (2011). Bioactive constituents and biochemical composition of the Egyptian brown alga Sargassum subrepandum (Forsk). Rev. Latinoam. Quím., 39(1), 62-74.
Gutiérrez, E.P., Picos, M.A., Leyva, N., Criollo, M.S., Vázquez, G. y Basilio, J. (2018). Flavonoids and Phenolic Acids from Oregano: Occurrence, Biological Activity and Health Benefits. Plants, 7(2), 1-23.
Hayashi, T., Urayama, O., Kawai, K., Hayashi, K., Iwanaga, S., Ohta, M. y Saito, T. (2006). Laughter regulates gene expression in patients with type 2 diabetes. Psychother. Psychosom., 75(1), 62-5.
Ho, B.C., Yu, S.L., Chen, J.J.W. y Chang, Y.H. (2011). Enterovirus-induced mir-141 contributes to shutoff of host protein translation by targeting the translation initiation factor, eif4e. Cell Host Microbe., 20, 58-69.
Hu, J. y Hsiung, G.D. (1989). Evaluation of new antiviral agents: in vitro perspectives. Antiviral Res., 11, 217-32.
Iwashima, M., Mori, J., Ting, X., Matsunaga, T., Hayashi, K. y Shinoda, D. (2005). Antioxidant and antiviral activities of plastoquinones from the brown alga Sargassum micracanthum, and a new chromene derivative converted from the plastoquinones. Biol. Pharm. Bull., 28 (2), 374-77.
Jassim, S. A. y Naji, M. A. (2003). Novel antiviral agents: a medicinal plant perspective. J. Appl. Microbiol., 95, 412-27.
Koch, F. y Koch, G. (1985). The molecular biology of Poliovirus. Springer-VerlagWein New York. R.Spies and Co. Press, Australia. pp. 203-8. ISBN: 978-3-7091-7000-7.
Jiang, P., Liu, Y., Ma, H.C., Paul, A.V. y Wimmer, E. (2014). Picornavirus Morphogenesis. Microbiol. Mol. Biol. Rev., 78(3), 418-437.
Kupila, L., Vuorinen, T., Vainionpää, R., Hukkanen, V., Marttila, R. J. y Kotilainen, P. (2006). Etiology of aseptic meningitis and encephalitis in an adult population. Neurology, 66(1), 75-80.
Lee, J. I. y Seo, Y. (2011). Chromanols from Sargassum siliquastrum and their antioxidant activity in HT 1080 cells. Chem. Pharm. Bull., 59, 757-61.
Liu, L., Heinrich, M., Myers, S. y Dworjanyn, S. A. (2012). Towards a better understanding of medicinal uses of the brown seaweed Sargassum in Traditional Chinese Medicine: A phytochemical and pharmacological review. J. Ethnopharmacol., 142, 591-619.
Lopes, N., Faccin, L.C., Fernandes, S., Cunha, A., Pontes, R., Carvalho, R.E. y Nozawa, C. (2013). Sulfated polysaccharide of Caesalpinia ferrea inhibit herpes simplex virus and poliovirus. Int. J. Biol. Macromol., 60, 93-99.
Kim, J.K., Redmon, S., Yaris, C., Pietrak, M. y Bricknell, I. (2014). Culture of Sargassum in Korea. A: techniques and potential for culture in the U.S. Marine Sea Grant College Program. https://digitalcommons.library.umaine.edu/seagrant_pub/32.
Moreira, Á. y Alfonso, G. (2013). Inusual arribazón de Sargassum fluitans (Børgesen) Børgesen en la costa centro-sur de Cuba. Rev. Invest. Mar., 33(2), 17‐20.
Mosmann, T. (1983). Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J. Immunol. Methods, 65, 55-63.
Norder, H., Bjerregaard, L., Magnius, L., Lina, B., Aymard, M. y Chomel J. J. (2003). Sequencing of ‘untypable’ enteroviruses reveals two new types, EV-77 and EV-78, within humanenterovirus type B and substitutions in the BC loop of the VP1 protein for known types. J Gen Virol., 84, 827-36.
Oberste, M.S. y Gerber S.I. (2014). Enteroviruses and parechoviruses: echoviruses, coxsackieviruses, and others. In R.A Kaslow, L.R. Stanberry and J.W. LeDuc (Ed.), Viral infections on human: epidemiology and control (pp. 225-45).
Pallansch, M., Oberste, M. y Whitton, L. (2013). Enteroviruses: polioviruses, coxsackieviruses, echoviruses and newer enterovirus. In D. Knipe, P. Howley, D. Griffin, et al, Fields Virology, Sixth ed. (pp. 490-530). Eds. Pa: Lippincott Williams and Wilkins Publisher. Philadelphia, USA, Volume 1. Poliovirus Laboratory Manual. World Health Organization. 4th Edition, 2004; WHO/IVB/04.10.
Ponce, L., del Barrio, G., Roque, A., Spengler, I. y Resik, S. (2018). Evaluación de la actividad antiviral del alga parda Sargassum fluitans frente a Echovirus 9. Rev. Cubana Med. Trop., 70(2).
Sarmiento, L., Más, P., Palomera, R., Morier, L., Fonseca, M. y Resik, S. (2007). Evidence for non poliovirus enterovirus multiplication in L20B cells. Rev. Cubana Med. Trop., 59(2), 98-101.
Semple, S.J., Pyke, S.M., Reynolds, G.D. y Flower, R.L. (2001). In vitro antiviral activity of the anthraquinone chrysophanic acid against poliovirus. Antiviral Res., 49(3), 169-78.
Shekerdemian, L. y Desmond, M.B. (2006). Acute viral myocarditis: Epidemiology and pathophysiology. Pediatr. Crit. Care Med., 7(6), 2-7.
Shirato, K., Kawase, M., Watanabe, O., Hirokawa, C., Matsuyama, S., Nishimura, H. y Taguchi, F. (2012). Differences in neutralizing antigenicity between laboratory and clinical isolates of HCoV-229E isolated in Japan in 2004-2008 depend on the S1 region sequence of the spike protein. J. Gen. Virol., 93, 1908-1917.
Sokolova, R.V., Ermakova, S.P., Awada, S.M., Zvyagintseva, T.N. y Kanaan H.M. (2011). Composition, structural characteristics, and antitumor properties of polysaccharides from the brown algae Dictyopteris polypodioides and Sargassum sp. Chem. Nat. Compd., 47, 329-34.
Thibaut, H.J., van der Linden, L., Jiang, P., Thys, B., Canela, M.D., Aguado, L., Neyts, J. (2014). Binding of glutathione to enterovirus capsids is essential for virion morphogenesis. PLOS Pathogens, 10(4). DOI: 10.1371/journal.ppat.1004039.
Upla, P. (2008). Integrin-mediated entry of echovirus 1. In Studies in Biological and Enviromental Science, University of Jyväskylä, pp. 86.
Wang, L., Wang, J., Wang, L., Ma, S. y Liu, Y. (2015). Antienterovirus 71 agents of natural products. Molecules, 20, 16320-33.
Wang, M., Tao, L. y Xu, H. (2016). Chinese herbal medicines as source of molecules with anti-enterovirus 71 activity. Chin. Med., 11, 2-26.
Wei, Y., Wang, C., Li, J., Qi, H. y Guo, Q. (2008). Effects of high-molecular-weight phlorotannins from Sargassum thunbergii Kuntze on anticoagulation activity and platelet cytosolic calcium level. Zhongguo Yaoke Daxue Xuebao, 39, 257-61.
Yamayoshi, S., Fujii, K. y Koike, S. (2014). Receptors for enterovirus 71. Emerg. Microbes Infect., 3, 7. Yang, B., Chuang, H. y Yang, K. D. (2009). Sialylated glycans as receptor and inhibitor of enterovirus 71 infection to DLD-1 intestinal cells. Virol. J., 6, 141. DOI:10.1186/1743-422X-6-141
Yang, Y., Xiu J., Liu, J., Zhang, L., Li, X., Xu, Y., Qin, C. y Zhang, L. (2013). Chebulagic acid, hydrolyzable tannin, exhibited antiviral activity in vitro and in vivo against human enterovirus 71. Int. J. Mol. Sci., 14, 9618-27.
Yende, S.R., Harle U.N. y Chaugule B.B. (2014). Therapeutic potential and health benefits of Sargassum species. Pharmacogn Rev., 8(15), 1-7.
Yi, E. J., Shin, Y.J., Kim, J.H., Kim, T.G. y Chang, S.Y. (2017). Enterovirus 71 infection and vaccines. Clin. Exp. Vaccine Res., 6, 4-14.
Zell, R., Delwart, E., Gorbalenya, A.E., Hovi, T., King, A.M.Q. y Knowles, N.J. (2017). ICTV Virus Taxonomy Profile: Picornaviridae. J. Gen. Virol., 98(10), 2421-22.
Zhang, Y., Zhu, H., Huang, C., Cui, X., Gao, Y., Huang, Y., Gong, W., Guo, S. (2006). Astragaloside iv exerts antiviral effects against coxsackievirus b3 by upregulating interferon-γ. J. Cardiovasc. Pharmacol., 47(2), 190-95.
Zhoua, T., Guo, H., Guo, J.T., Cuconati, A., Mehta, A. y Block, T.M. (2006). Hepatitis B virus e antigen production is dependent upon covalently closed circular (ccc) DNA in HepAD38 cell cultures and may serve as a cccDNA surrogate in antiviral screening assays. Antiviral Res., 72(2), 116-24.
Zhu, W., Chiu, L.C.M., Ooi, V.E.C., Chan, P.K.S y Ang, P.O. (2006). Antiviral property and mechanisms of a sulphated polysaccharide from the brown alga Sargassum patens against Herpes simplex virus type 1. Phytomedicine, 13(9), 695-701.
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