Avances en la producción de juveniles del pargo flamenco (Lutjanus guttatus, Steindachner, 1869)
Palabras clave:
pargo, Lutjanus guttatus, producción masiva, cría de larvas y juvenilesResumen
El presente estudio describe los avances en la producción de juveniles del pargo flamenco Lutjanus guttatus. Los reproductores (tres grupos, cada uno de 10 hembras, media ± SD: 0.91± 0.2 kg y 20 machos 1.2 ± 0.3 kg) con dos años, fueron aclimatados por 1.5 años en tres tanques comunales cilíndricos de fibra de vidrio (18-m3 ). Los huevos fertilizados fueron obtenidos durante las temporadas naturales de desove. Los huevos flotantes (promedio de 90 ± 2%) se colectaron entre 12 a 14 horas post-desove. En promedio, el 97% de ellos fueron transparentes, con un embrión vivo. La densidad inicial de siembra para la cría larval fue de 196 ± 70 embriones/l, incubados en doce tanques cilíndricos de 6-m3 con 3-m3 de agua. El periodo de incubación fue de 20 h a 26-28 °C. Los porcentajes de eclosión y de supervivencia a las 48- horas post-eclosión (hpe) fueron 90 ± 2% y 55 ± 10%, respectivamente, con un promedio de larvas de 48-hpe de 281,258 ± 92,202 por tanque y 105 ± 33/l. Se cosechó un total de 338,812 juveniles con 45 días después de la eclosión (dpe) a una densidad promedio de 28,234 ± 11,890 por tanque (2.4 ± 1.0/l). En el alevinaje se cosecharon 180,000 juveniles de 90 dpe (peso del cuerpo: 5-8 g). La supervivencia desde la primera alimentación hasta los 45 dpe fue de 12 ± 9 %, con un peso medio de 0.47 ± 0.10 g y una biomasa final por tanque de 13 kg. El índice de eficiencia a los 45 días de cría fue de 10 larvas de 48 hpe por juvenil producido, mientras que a los 90 dpe el índice fue de 19 larvas de 48 hpe por juvenil producido. Los resultados mostraron que los cambios a los previos protocolos de cultivo de la planta de peces CIAD-Mazatlán, aseguran una mayor producción de juveniles.
Recibido: 04-08-2020 Aceptado: 04-09-2020 Publicado: 7-1-2021
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Abdo-de la Parra, M. I., Rodríguez-Ibarra, L. E., Campillo-Martínez, F., Velasco-Blanco, G., García-Aguilar, N., Alvarez-Lajonchère, L. & Voltolina, D. (2010). Efecto de la densidad de siembra sobre el crecimiento y supervivencia larval del pargo lunarejo Lutjanus guttatus. Rev. Biol. Mar. Oceanogr., 45, 141-146.
Alvarez-Lajonchère, L., Abdo de la Parra, M. I., Rodríguez-Ibarra, L. E., Velasco Blanco, G., Puello Cruz, A., González Rodríguez, B., N., Ibarra Soto, A. (2012). Scale-up of spotted rose snapper, Lutjanus guttatus, larval rearing at Mazatlan, Mexico. J. World Aquacult.
Soc., 43, 411-422.
Alvarez-Lajonchère, L., Cerqueira, V. R., Silva, I, Araújo, D. J & dos Reis, M. (2002). Mass production of juveniles of the fat snook Centropomus parallelus in Brazil. J. World Aquacult. Soc., 33, 506-516.
Alvarez-Lajonchère, L., Reina-Cáñez, M. A., Camacho-Hernández, M. A. & Kraul, S. (2007). Design of a pilot-scale tropical marine finfish hatchery for a research center at Mazatlan, Mexico. Aquacult. Eng., 36, 81-96.
Amorim, P., Sousa, P., Jardim, E. & Menezes, G. M. (2019). Sustainability status of data-limited fisheries: global challenges for snapper and grouper. Front. Mar. Sc., 6(654), 1-17. http://www.frontiersin.org. Doi: 10.3389/fmars.2019.00654.
Surtida, M. B., & Buendia, R. Y. (2002). The emerging red snapper culture. Asian Aquacult., 24 (4), 23-24, 28. http://repository.seafdec.org.ph.
Bardon-Albaret A. & Saillant, E. (2017). Egg quality traits and predictors of embryo and fry viability in red snapper Lutjanus campechanus. Aquacult. Rep., 7, 48-56.
Benetti D., Matera, J., Stevens O. M., Alarcon J. F., Haewl , F., Rotman, F., Aldridge, L. (2002). Growth, survival, and feed conversion rates of hatcheryreared mutton snapper Lutjanus analis cultured in floating net cages. J. World Aquacult. Soc., 33, 349-357.
Boza-Abarca, J, Calvo-Vargas, E., SolisOrtiz, N. & Komen, J. (2008). Induced spawning and larval rearing of spotted rose snapper, Lutjanus guttatus, at the Marine Biology Station, Puntarenas, Costa Rica. Cien. Mar., 34, 239-252.
Carrillo, M., Zanuy, S., Oyen, F., Cerdá, J. Navas, J. M. & Ramos, J. (2000). Some criteria of the quality of the progeny as indicators of physiological broodstock fitness. In Recent advances in Mediterranean finfish species diversification. Proceedings of the seminar of
the CIHEAM Network on technology of aquaculture in the Mediterranean (TECAM) (pp. 63-73). Jointly organized by CHEAM and FAO, Zaragoza (Spain), 24-28 may 1999. Cahiers, 47.
Davis, D. A., Bootes, K. L. & Arnold, C. R. (2000). Snapper (Family Lutjanidae) culture. En R. R. Stickney (Ed.), Encyclopedia of aquaculture (pp. 884-889). John Wiley and Sons, Inc., New York.
Duray M. N., Aplazan, L. G. & Estudillo, C. B. (1996). Improved hatchery rearing of red mangrove snapper, Lutjanus argentimaculatus, in large tanks with small rotifer (Brachionus plicatilis) and Artemia. Isr. J. Aquacult./Bamidgeh, 48, 123-132.
FAO (2019). FISHSTAT Plus: Universal software for fishery statistical time series. Version 20191.0.
Gutierrez-Sigeros, I., Ibarra-Castro, L. Alvarez-Lajonchère, L. & SanchezZamora, A. (2018). Natural spawning and scaling-up of yellowtail snapper (Ocyurus chrysurus): Larval rearing for the mass production of juveniles. Aquaculture, 491, 252-257.
Hagiwara, A., Wullur, S., Marcial, H. S., Hirai, N. & Sakakura, Y. (2014). Euryhaline rotifer Proales similis as initial live food for rearing fish with small mouths. Aquaculture, 432, 470-474.
Hecht, T. & Pienaar, A. G. (1993). A review of cannibalism and its implications in fish larviculture. J. World Aquacult. Soc., 24, 246-261.
Herrera-Ulloa, A., Chacón-Guzmán, J., Zúñiga-Calero, G. & Jiménez-Montealegre, R. (2010). Spotted rose snapper (Lutjanus guttatus) aquaculture research and development as socio-economic alternative for Costa Rican fisheries communities. World Aquacult., 41, 20-22.
Ibarra-Castro, L. & Alvarez-Lajonchère, L. (2009). An improved induced-spawning protocol for spotted rose snapper Lutjanus guttatus. Isr. J. Aquacult./Bamidgeh, 61, 121-133.
Ibarra-Castro, L. & Alvarez-Lajonchere, L. (2011). GnRHa induced multiple spawns and volition spawning of captive spotted rose snapper (Lutjanus guttatus) at Mazatlan, Mexico. J. World Aquacult. Soc,. 42, 564-574.
Ibarra-Castro, L. & Duncan, N. J. (2007). GnRHa-induced spawning of wildcaught spotted rose snapper Lutjanus guttatus. Aquaculture, 272, 737-746.
Kraul, S., Brittain, K., Cantrell, R., Nagao, T., Ako, H., Ogasawara, A. & Kitagawa, H. (1993). Nutritional factors affecting stress resistance in the larval mahimahi, Coryphaena hippurus. J. World Aquacult. Soc., 24, 186-193.
Kuronuma, K. & Fukusho, K. (1984). Rearing of marine fish larvae in Japan. Ottawa, IDRC-TS473. Leu, M.-Y., Chen, I.-H. & Fang, L.-S. (2003). Natural spawning and rearing of mangrove red snapper, Lutjanus argentimaculatus, larvae in captivity. Isr. J. Aquacult./Bamidgeh, 55, 22-30.
Ogle, J. T. & Lotz, J. M. (2006). Characterization of an experimental indoor larval production system for red snapper. N. Am. J. Aquacult., 68, 86-91.
Ostrowski, A. C., Iwai, T., Monahan, S., Unger, S., Dagdagan, D., Murakawa, P., Pigao, C. (1996). Nursery production technology for Pacific threadfin (Polydactylos sexfilis). Aquaculture, 139, 19-39.
Rojo-Cebreros, A. H., Ibarra-Castro, L., Guerrero-Carlock, E., Sánchez-Téllez, J. L. & Alvarez-Lajonchère, L. (2017). Producción piloto del rotífero Brachionus sp. bajo diferentes sistemas de cultivo. Rev. Biol. Mar. Oceanogr., 52, 539-549.
Sardenberg, B., Benetti, D. D., Lara, C., Lutz, R. P., Buchalla, Y., Soligo, T., … Suarez, J. (2014). Development and implementation of vertically integrated aquaculture of Pacific red snapper Lutjanus guttatus in Costa Rica. III Aquaculture Investment Workshop 2014, La
Paz, Baja California Sur, México.
Schipp, G. R., Bosmans, J. M. P. & Gore, D. J. (2001). A semi-intensive larval rearing system for tropical marine fish. En C. I. Hendry, G. Van Stappen, M. Wille, P. Sorgeloos, (Eds.), Larvi’ 01-Fish & Shellfish Larviculture Symposium (pp- 536-539). European Aquaculture Society, Special Publication, Oostende, Belgium.
Schipp, G., Bosmans, J. & Humphrey, J. (2007). Northern Territory barramundi farming handbook. Northern Territory Department of Primary Industry, Fisheries and Mines. Technical Publication.
Singhagraiwan, T. & Doi, M. (1993). Biology and culture of the red snapper, Lutjanus argentimaculatus. The Eastern Marine Fisheries Development Center and Japan International Cooperation Agency, Thailand.
Timmons, B. M. & Ebeling J. M. (2010). Recirculating aquaculture. NRCA, New York.
Tucker, J. W., Jr. (1998). Marine fish culture. Kluwer Academic Publishers, Boston.
Turano, M. J., Davis, D. A. & Arnold, C. R. (2000). Observations and technologies for maturation, spawning, and larval rearing of the yellowfin snapper Ocyurus chrysurus. J. World Aquacult. Soc., 31, 59-68.
Watanabe, W. O., Ellis, E. P., Ellis, S. C., Chaves, J., Manfredi, C., Hagood, R. W., … Arnesen, S. (1998). Artificial propagation of mutton snapper Lutjanus analis: a new candidate marine fish species for aquaculture. J. World Aquac. Soc., 29, 176-187.
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